小分子核糖核酸

广泛存在于植物、动物及动植物病毒等生物中的一类进化保守性的非编码小分子调控RNA

小分子核糖核酸(英语:microRNA缩写miRNA),又称微RNA[1](微核糖核酸),是真核生物中广泛存在的一种长约21到23个核苷酸RNA分子,可调节其他基因表达[2][3]。miRNA来自一些从DNA转录而来,但无法进一步翻译蛋白质的RNA(属于非编码RNA)。miRNA通过与目标mRNA结合,进而抑制转录后的基因表达[4],在调控基因表达、细胞周期、生物体发育时序等方面起重要作用。在动物中,一个miRNA通常可以调控数十个基因

小分子核糖核酸(miRNA)与mRNA作用的图
miRNA茎环的实例,成熟miRNA显示为红色
甘蓝pre-microRNA中的茎环(stem-loop)二级结构

这些RNA是从初级转录本(primary transcript)出来的,也就是pri-miRNA,转变成为称为pre-miRNA的茎环结构,最后成为具有功能的成熟miRNA。

1989年,维克托·安布罗斯发现秀丽隐杆线虫(C. elegans)中有个基因lin-4抑制另一个基因 lin-14。他们认为lin-4应该也表达一种调控蛋白质,因为基因转录成RNA并翻译成蛋白质是当时认为的公理。不过1993年,维克托的学生 Rosalind Lee 和 Phonda Feinbaum 克隆出了lin-4,却发现这个基因非常小,不足以做出蛋白质,而且这个基因的产物确实也不是蛋白质,而是一个长度只有22个核苷酸的RNA,后来人们又发现此miRNA可以和其他蛋白质结合,阻断其他表现,最终产生上述的基因抑制现象。它是由单链的RNA分子产生,这个分子的一端折回来形成不完全的互补配对,称“茎环[5]

pri-miRNA长度大约为300~1000个碱基,pri-miRNA经过一次加工后,成为pre-miRNA即microRNA前体,长度大约为70~90个碱基;pre-miRNA再经过Dicer酶酶切后,成为长约20~24nt的成熟miRNA。实际研究中,pre-miRNA应用最早,也最广泛。近年研究发现microRNA的双臂对成熟miRNA的形成有着十分重要的作用。

与小分子siRNAs相比,miRNA在分子特性等方面是相似的,但也存在不少的差异。siRNA是双股RNA,3'端有2个非配对碱基,通常为UU;miRNA是单股RNA。siRNAs是由dsRNA在Dicer酶切割下产生,而成熟miRNAs的产生要复杂一些,首先pri-miRNA在核内由一种称为Drosha酶处理后成为大约70nt的带有茎环结构的Precursor miRNAs(pre-miRNAs),这些pre-miRNAs再在Exportin-5帮助下转运到细胞核外之后再由胞质Dicer酶进行处理,酶切后成为成熟的miRNAs。

生命的一些重要活动如幼虫的生长发育、细胞的发生和分化、神经系统的分化等都被一些非编码蛋白的小RNA的调控,而除miRNA、siRNA以外的小RNA我们目前知之甚少。

2024年10月7日,miRNA及其转录后修饰机制发现者维克托·安布罗斯加里·鲁夫昆获得诺贝尔生理学或医学奖[6][7]

命名规则

miR-前缀后面所跟着的数字,代表命名的顺序,比如,miR-124比miR-456发现得早。

“miR-”代表成熟的miRNA、“mir-”代表pre-miRNA和pri-miRNA、“MIR”代表编码miRNA的基因[8]

miRNA几乎全是独一的编码顺序,但对于拥有一两个碱基不同的则会被标上字母以示,例如,miR-124a与miR-124b。 若成熟的miRNA相同,但pre-miRNA和pri-miRNA和编码他们的基因来自于不同的基因组,则使用数字来表示,例如,mir-194-1和mir-194-2表示两个pre-, pri-miRNA剪切后的成熟miRNA是完全相同的,但却是两个不同的来源。

前缀的三个字母代表了不同的种族来源,例如,hsa-miR-194代表miRNA来源于人类,oar-miR-124来源于绵羊。

对于形成pre-,pri-miRNA茎环的两端miRNA, 通常一端在数量上远远超过另一端。数量优势的一端往往称为guide strand,而另一端被称为passenger strand,通常被大量降解,用*号来表示,例如miR-124和miR-124*。

生物合成机制

 

有多达40%的miRNA位于其他基因的内含子或甚至外显子[9]。他们通常(但不限于)在有义方向被发现[10][11],因此它们通常与他们宿主基因一起调节[9][12][13]。 位于DNA模板上的序列,并非成熟miRNA的最终编码:有6%的人类miRNA有RNA编辑的现象,RNA上特定位置的修饰,会产生和他们DNA不同的产物。这增加了miRNA作用的多样性和范围,远超过了基因组单独引起的作用。

转录

miRNA基因通常由RNA聚合酶Ⅱ转录[14][15],聚合酶常常会结合到DNA序列附近的启动子,并将其编码成前miRNA的发夹环。 所得到的转录产物,上有5'端帽多聚腺苷酸尾并已被剪接。动物的miRNA最初转录为约80个核苷酸的RNA茎环,其会交互形成几百个核苷酸长的miRNA前体,称作pri-miRNA[14][10]。当在3'UTR(3'非编码区)中发现茎-环前体时,该转录物可以作为pri-miRNA和mRNA[10]。 此外,RNA聚合酶Ⅲ也会转录一些miRNA,特别是具有上游Alu元件的、tRNA或哺乳动物宽分散重复(mammalian-wide interspersed repeats)启动子单元[16]

核加工

 
人类Drosha蛋白的X射线晶体结构与两个DGCR8分子(绿色)的C端螺旋复合体。Drosha包含两个核糖核酸酶III结构区域(蓝色和橙色),双链RNA结合结构区域(黄色),以及含有结合两个锌离子的平台结构域(灰色)。来源:PDB 5B16.

单个pri-miRNA可以含有1至6个miRNA precursor,这些发夹环结构各自由约70个核苷酸组成,而每个发夹的侧翼包含了RNA加工的必要序列。 在pri-miRNA中发夹的双链RNA(dsRNA)结构,会被称为DiGeorge综合征关键区8(DGCR8或无脊椎动物中的“Pasha”)的核蛋白所识别。随后DGCR8与Drosha酵素结合形成微加工复合体(Microprocessor complex)[17][18]

在该复合物中,DGCR8使Drosha的RNase III催化结构区域定向,借此从发夹碱基中切割约11个核苷酸,从而释放pri-miRNA的发夹弯[19][20]。所得产物在其3'端具有两个核苷酸的突出端,其也具有3'羟基和5'磷酸基团。它通常被称为前miRNA(pre-miRNA)。有许多对于有效加工重要的pre-miRNA下游的序列基序(Sequence motif),已被识别鉴定了[21][22][23]

而对于那些绕过微加工复合体,直接剪接出内含子的前miRNA,被称为“Mirtrons”。其最初被认为只存在于果蝇和秀丽隐杆线虫中,然而现在已经在哺乳动物中发现其存在[24]。 有多达16%的pre-miRNA可以透过核RNA编辑改变[25][26][27],其中最常见地,如腺苷脱氨酶作用于RNA(ADAR)上的腺苷肌苷(A至I)转换。另外,RNA编辑也能停止核加工(例如pri-miR-142,其会导致核糖核酸酶Tudor-SN的降解),并改变下游流程包括细胞质miRNA的加工与目标专一性(像是改变中枢神经系统中miR-376的种子区域)[25]

核输出

 
人类exportin-5蛋白(红色)与Ran-GTP(黄色)复合物和pre-miRNA(绿色)及双核苷酸突出端识别元件(橙色)。来源:PDB 3A6P.

核细胞穿梭蛋白Exportin-5涉及前miRNA发夹从细胞核输出的过程。这种蛋白质是karyopherin家族的一个成员,它会识别前miRNA发夹的3'末端,由RNase III酶与Drosha遗留的两个核苷酸的突出端。 Exportin-5-mediated介导运输到细胞质是能量依赖的(主动运输),其使用GTP来绑定Ran蛋白。[28]

细胞质加工

在细胞质中,前miRNA发夹会被由RNaseIII酶Dicer所切割[29] ,该内切核糖核酸酶与miRNA发夹的5'和3'端相互作用并切除连接3'和5'臂的环[30] ,产生长度为22个核苷酸的不完全的miRNA:miRNA*双链体[29] 。整个发夹长度和环尺寸都会影响Dicer的加工效率。由于RNA的不完全配对性质,miRNA:miRNA*双链体的配对程度也会影响切割[29][31]

此外,一些富含G的pre-miRNA可以潜在地利用G-四联体,来替代典型的茎-环结构。 例如,人的pre-miRNA 92B就使用G-四联体,来抵抗Dicer在细胞质中的介导切割。[32] 虽然双链体的任一链,皆可作为潜在作用的功能miRNA,但通常只有一条链会掺入RNA诱导沉默复合体(RISC)中,在其中该miRNA会与其目标mRNA相互作用。


植物中的生物合成

在植物中miRNA的生物合成与动物的最大差异,主要是在于核加工和输出的过程中:其不像动物使用两种不同的切割酶(一种位于核内部、一种位于核外部)。植物的两种切割,都是利用称为Dicer-like1(DL1)(Dicer同源物)进行,由于DL1仅在植物的细胞核中表达,这表明这两种切割都在核内发生。在植物miRNA:miRNA *双链体被转运出细胞核之前,其3'突出端会被称为Hua-Enhancer1(HEN1)的RNA甲基转移蛋白甲基化,然后透过称为Hast(HST)的蛋白质(Exportin 5蛋白的同源物)将双链体从细胞核运出到细胞质中,在那里它们会分解并且生成成熟的miRNA,来结合到RISC中。[33]

参考文献

  1. ^ 存档副本. [2021-07-06]. (原始内容存档于2021-07-09). 
  2. ^ Ambros, V. The functions of animal microRNAs. Nature. Sep 16, 2004, 431 (7006): 350–5. PMID 15372042. doi:10.1038/nature02871. 
  3. ^ Bartel, DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell. Jan 23, 2004, 116 (2): 281–97. PMID 14744438. doi:10.1016/S0092-8674(04)00045-5. 
  4. ^ Bartel DP. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. January 2009, 136 (2): 215–33. PMC 3794896 . PMID 19167326. doi:10.1016/j.cell.2009.01.002. 
  5. ^ Ruvkun G(1), Giusto J. The Caenorhabditis elegans heterochronic gene lin-14 encodes a nuclear protein that forms a temporal developmental switch. Nature. Mar 1989, 338 (6213): 313–9. PMID 2922060. doi:10.1038/338313a0. 
  6. ^ The Nobel Prize in Physiology or Medicine 2024. NobelPrize.org. [2024-10-07] (美国英语). 
  7. ^ Lewis, Tanya. Nobel Prize in Physiology or Medicine Awarded for Discovery of MicroRNA Gene Regulation. Scientific American. [2024-10-07] (英语). 
  8. ^ Wright, MW; Bruford, EA. Naming 'junk': human non-protein coding RNA (ncRNA) gene nomenclature. Human genomics. Jan 2011, 5 (2): 90–8. PMC 3051107 . PMID 21296742. doi:10.1186/1479-7364-5-2-90. 
  9. ^ 9.0 9.1 Rodriguez A, Griffiths-Jones S, Ashurst JL, Bradley A; Griffiths-Jones; Ashurst; Bradley. Identification of mammalian microRNA host genes and transcription units. Genome Res. October 2004, 14 (10A): 1902–10. PMC 524413 . PMID 15364901. doi:10.1101/gr.2722704. 
  10. ^ 10.0 10.1 10.2 Cai X, Hagedorn CH, Cullen BR; Hagedorn; Cullen. Human microRNAs are processed from capped, polyadenylated transcripts that can also function as mRNAs. RNA. December 2004, 10 (12): 1957–66. PMC 1370684 . PMID 15525708. doi:10.1261/rna.7135204. 
  11. ^ Weber MJ. New human and mouse microRNA genes found by homology search. FEBS J. January 2005, 272 (1): 59–73. PMID 15634332. doi:10.1111/j.1432-1033.2004.04389.x. 
  12. ^ Kim YK, Kim VN; Kim. Processing of intronic microRNAs. EMBO J. February 2007, 26 (3): 775–83. PMC 1794378 . PMID 17255951. doi:10.1038/sj.emboj.7601512. 
  13. ^ Baskerville S, Bartel DP; Bartel. Microarray profiling of microRNAs reveals frequent coexpression with neighboring miRNAs and host genes. RNA. March 2005, 11 (3): 241–7. PMC 1370713 . PMID 15701730. doi:10.1261/rna.7240905. 
  14. ^ 14.0 14.1 Lee Y, Kim M, Han J, Yeom KH, Lee S, Baek SH, Kim VN; Kim; Han; Yeom; Lee; Baek; Kim. MicroRNA genes are transcribed by RNA polymerase II. EMBO J. October 2004, 23 (20): 4051–60. PMC 524334 . PMID 15372072. doi:10.1038/sj.emboj.7600385. 
  15. ^ Zhou X, Ruan J, Wang G, Zhang W; Ruan; Wang; Zhang. Characterization and identification of microRNA core promoters in four model species. PLoS Comput. Biol. March 2007, 3 (3): e37. Bibcode:2007PLSCB...3...37Z. PMC 1817659 . PMID 17352530. doi:10.1371/journal.pcbi.0030037. 
  16. ^ Faller M, Guo F; Guo. MicroRNA biogenesis: there's more than one way to skin a cat. Biochim. Biophys. Acta. November 2008, 1779 (11): 663–7. PMC 2633599 . PMID 18778799. doi:10.1016/j.bbagrm.2008.08.005. 
  17. ^ Lee, Y; Ahn, C; Han, J; Choi, H; Kim, J; Yim, J; Lee, J; Provost, P; Rådmark, O; Kim, S; Kim, VN. The nuclear RNase III Drosha initiates microRNA processing.. Nature. 25 September 2003, 425 (6956): 415–9. PMID 14508493. doi:10.1038/nature01957. 
  18. ^ Gregory RI, Chendrimada TP, Shiekhattar R; Chendrimada; Shiekhattar. MicroRNA biogenesis: isolation and characterization of the microprocessor complex. Methods Mol. Biol. 2006, 342: 33–47. ISBN 1-59745-123-1. PMID 16957365. doi:10.1385/1-59745-123-1:33. 
  19. ^ Han, J; Lee, Y; Yeom, KH; Kim, YK; Jin, H; Kim, VN. The Drosha-DGCR8 complex in primary microRNA processing.. Genes & Development. 15 December 2004, 18 (24): 3016–27. PMC 535913 . PMID 15574589. doi:10.1101/gad.1262504. 
  20. ^ Han, J; Lee, Y; Yeom, KH; Nam, JW; Heo, I; Rhee, JK; Sohn, SY; Cho, Y; Zhang, BT; Kim, VN. Molecular basis for the recognition of primary microRNAs by the Drosha-DGCR8 complex.. Cell. 2 June 2006, 125 (5): 887–901. PMID 16751099. doi:10.1016/j.cell.2006.03.043. 
  21. ^ Conrad, Thomas; Annalisa, Marsico; Gehre, Maja; Ørom, Ulf. Microprocessor activity controls differential miRNA biogenesis In Vivo.. Cell Reports. Oct 23, 2014, 9 (2): 542–554. PMID 25310978. doi:10.1016/j.celrep.2014.09.007. 
  22. ^ Auyeung, Vincent; Igor, Ulitsky; McGeary, SE; Bartel, DP. Beyond secondary structure: primary-sequence determinants license pri-miRNA hairpins for processing.. Cell. Feb 14, 2013, 152 (4): 844–858. PMC 3707628 . PMID 23415231. doi:10.1016/j.cell.2013.01.031. 
  23. ^ Ali PS, Ghoshdastider U, Hoffmann J, Brutschy B, Filipek S. Recognition of the let-7g miRNA precursor by human Lin28B. FEBS Letters. 2012, 586 (22): 3986–90. PMID 23063642. doi:10.1016/j.febslet.2012.09.034. 
  24. ^ Berezikov E, Chung WJ, Willis J, Cuppen E, Lai EC; Chung; Willis; Cuppen; Lai. Mammalian mirtron genes. Mol. Cell. October 2007, 28 (2): 328–36. PMC 2763384 . PMID 17964270. doi:10.1016/j.molcel.2007.09.028. 
  25. ^ 25.0 25.1 Kawahara Y, Megraw M, Kreider E, Iizasa H, Valente L, Hatzigeorgiou AG, Nishikura K; Megraw; Kreider; Iizasa; Valente; Hatzigeorgiou; Nishikura. Frequency and fate of microRNA editing in human brain. Nucleic Acids Res. September 2008, 36 (16): 5270–80. PMC 2532740 . PMID 18684997. doi:10.1093/nar/gkn479. 
  26. ^ Winter J, Jung S, Keller S, Gregory RI, Diederichs S; Jung; Keller; Gregory; Diederichs. Many roads to maturity: microRNA biogenesis pathways and their regulation. Nat. Cell Biol. March 2009, 11 (3): 228–34. PMID 19255566. doi:10.1038/ncb0309-228. 
  27. ^ Ohman M. A-to-I editing challenger or ally to the microRNA process. Biochimie. October 2007, 89 (10): 1171–6. PMID 17628290. doi:10.1016/j.biochi.2007.06.002. 
  28. ^ Murchison EP, Hannon GJ; Hannon. miRNAs on the move: miRNA biogenesis and the RNAi machinery. Curr. Opin. Cell Biol. June 2004, 16 (3): 223–9. PMID 15145345. doi:10.1016/j.ceb.2004.04.003. 
  29. ^ 29.0 29.1 29.2 Lund E, Dahlberg JE; Dahlberg. Substrate selectivity of exportin 5 and Dicer in the biogenesis of microRNAs. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 2006, 71: 59–66. PMID 17381281. doi:10.1101/sqb.2006.71.050. 
  30. ^ Park, JE; Heo, I; Tian, Y; Simanshu, DK; Chang, H; Jee, D; Patel, DJ; Kim, VN. Dicer recognizes the 5' end of RNA for efficient and accurate processing.. Nature. 13 July 2011, 475 (7355): 201–5. PMID 21753850. doi:10.1038/nature10198. 
  31. ^ Ji X. The mechanism of RNase III action: how dicer dices. Curr. Top. Microbiol. Immunol. Current Topics in Microbiology and Immunology. 2008, 320: 99–116. ISBN 978-3-540-75156-4. PMID 18268841. doi:10.1007/978-3-540-75157-1_5. 
  32. ^ Mirihana Arachchilage G, Dassanayake AC, Basu S. A Potassium Ion-Dependent RNA Structural Switch Regulates Human Pre-miRNA 92b Maturation. Chem. Biol. 2015, 22: 262–272. PMID 25641166. doi:10.1016/j.chembiol.2014.12.013. 
  33. ^ Lelandais-Brière C, Sorin C, Declerck M, Benslimane A, Crespi M, Hartmann C; Sorin; Declerck; Benslimane; Crespi; Hartmann. Small RNA diversity in plants and its impact in development. Current Genomics. March 2010, 11 (1): 14–23. PMC 2851111 . PMID 20808519. doi:10.2174/138920210790217918. 

外部链接

参见